尼氏染色是一种用于神经组织学研究的经典染色技术，主要用于显示神经细胞内的尼氏体（Nissl bodies）。尼氏体是神经元中的一种重要结构，主要由粗面内质网组成，与蛋白质合成密切相关。通过尼氏染色，可以清晰地观察到神经细胞的形态和分布，为神经科学研究提供了重要的信息。

以下是尼氏染色的基本步骤：

1. 样本准备：首先需要获取新鲜或固定的神经组织样本。固定液的选择对染色效果至关重要，常用的固定剂包括福尔马林、酒精等。固定后的组织应经过脱水、透明化处理，以便后续的石蜡包埋。

2. 切片：将处理好的组织块进行石蜡包埋，并使用切片机切成薄片，通常厚度为5-10微米。切片完成后，将其粘附在载玻片上，确保切片平整且无气泡。

3. 脱蜡和水化：将切片放入二甲苯中脱去石蜡，然后依次用水和酒精梯度进行水化，直至恢复到水的状态。这一过程有助于切片更好地吸收染料。

4. 染色：使用含有碱性品红或其他染料的溶液对切片进行染色。染色时间根据具体实验需求而定，通常为几分钟至十几分钟不等。染色过程中需定期检查切片颜色变化，以避免过度染色。

5. 分化：染色完成后，使用弱酸或乙醇溶液对切片进行分化，去除多余的染料，使尼氏体呈现清晰的对比度。分化程度同样需要精确控制，过强或不足都会影响最终效果。

6. 复染和封片：为了增强背景对比，可选择性地进行复染。最后，使用中性树胶或其他封片介质将盖玻片固定在切片上，形成完整的标本。

7. 显微镜观察：完成上述步骤后，即可在光学显微镜下观察染色结果。尼氏体通常表现为深蓝色或紫色颗粒状结构，分布在神经细胞胞质内。

以上便是尼氏染色的基本流程。需要注意的是，在实际操作中，每一步骤的具体参数可能因实验室条件和个人经验而有所不同。因此，在初次尝试时，建议多做对照实验，逐步优化条件，以获得最佳的染色效果。此外，良好的实验室卫生习惯和安全措施也是保证实验成功的重要因素之一。